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Organisms this product works with:
Other products used in the isolation of Streptococci:
CODE : CM0259
Milieu sélectif pour la recherche et l’isolement des streptocoques
et staphylocoques dans les selles, les eaux usées et autres produits.
Enrichi avec du sang, ce milieu peut être employé pour la détection
simultanée de réactions hémolytiques.
COMPOSITION |
(grammes/litre) |
Tryptose | 10,0 |
Extrait de viande de boeuf | 3,0 |
Chlorure de sodium | 5,0 |
Azoture de sodium | 0,2 |
Agar | 12,0 |
pH 7,2 ± 0,2 |
500 grammes permettent de préparer 16,6 litres de milieu.
PREPARATION
Verser 30,2 g de poudre dans un litre d’eau distillée. Porter à ébullition
jusqu’à dissolution complète. Stériliser 15 minutes à 121°C à l’autoclave.
Ajouter 5 % de sang stérile au milieu préalablement refroidi à 45–50°C.
UTILISATION
C’est un milieu sélectif pour la recherche et l’isolement
des streptocoques dans les selles, les eaux usées et autres produits
renfermant une flore mixte. La gélose Sang-Azoture est semblable au
milieu utilisé par Edwards 1pour l’isolement des streptocoques
responsables de mammites. L’azoture de sodium a un effet bactériostatique
sur la plupart des microorganismes Gram –, mais permet la croissance
des microorganismes Gram +, comme les streptocoques et quelques souches de
staphylocoques. Les Proteus sont un peu plus résistants que
les autres entérobactéries mais l’envahissement est inhibé (Snyder
et Lichstein 2, Lichstein et Snyder 3).
A la concentration et au pH indiqués ci-dessus, l’azoture de
sodium n’exerce aucun effet notable sur l’hémolyse si bien
que le milieu, enrichi en sang, peut être utilisé pour une détection
simultanée de réactions hémolytiques.
Le milieu Sang–Azoture est recommandé par l’American Public
Health Association 4 pour l’isolement des streptocoques dans les fromages.
Les boîtes inoculées avec des dilutions de fromage émulsionnées
sont incubées à 37°C et les colonies suspectes sont repiquées
pour identification.
Il existe des variantes de ce milieu recommandées pour différents
usages :
1 Packer 5 préconise une concentration d’azoture de sodium
de
0,9 g par litre et l’addition de 0,002 g de cristal violet par litre. Le
pH est également ajusté à 6,8 ± 0,1. On obtient
ainsi un milieu plus sélectif pour la recherche des streptocoques fécaux
dans les aliments.6
2 Packer5 et Wood 7 ont repris la formule ci-dessus avec 5
% de sang en augmentant la concentration du cristal violet à 0,01 g
par litre pour l’isolement
d’Erysipelothrix rhusiopathiae et Streptococcus pneumoniae.
3 Dale 8and
Bohm 9 conseillent d’ajouter du phénol (1,0 à 2,5
g par litre) à la formule de Packer pour isoler E. rhusiopathiae.
CONSERVATION
Conserver le milieu déshydraté à 10–25°C jusqu’à la
date de péremption indiquée sur le flacon.
Conserver le milieu prêt à l’emploi à 2–8°C.
CONTROLE DE QUALITE
Contrôle positif :
Enterococcus faecalis ATCC® 29212
Staphylococcus aureus ATCC® 25923
Contrôle négatif :
Proteus vulgaris ATCC® 13315
Escherichia coli ATCC® 25922
PRECAUTIONS
Les Proteus et les Escherichia ne sont pas inhibés avec la formule d’Edwards.
Utiliser
toujours un inoculum léger pour obtenir de meilleurs résultats
sélectifs.
Une incubation anaérobie favorisera l’hémolyse.
L’hémolyse n’est pas caractéristique sur le milieu
modifié de Packer. Streptococcus lactis ne poussera pas sur la formule
modifiée de Packer avec 5 % de sang de mouton.
Lire le paragraphe 2.3.8
sur les risques et précautions à prendre
avec les milieux contenant de l’azoture.
BIBLIOGRAPHIE
1 Edwards S.J.(1933), J. Comp. Path. Therap., 46 (4), 211-217.
2 Snyder M.L. and
Lichstein H.C. (1940), J. Infect. Dis., 67(2), 113-115.
3 Lichstein H.C. and
Snyder M.L. (1941), J. Bact., 42 (5), 653-664.
4 American Public Health Association
(1978), Standard Methods for the Examination of Dairy Products, 14th Edn.
APHA
Inc. New York.
5 Packer R.A. (1943), J. Bact., 46, 343-349.
6 Mossel D.A.A., Diepen H.M.J. van
and de Bruin A.S. (1957), J. Appl. Bact., 20 (2), 265-272.
7 Wood R.L. (1965)
Amer. J. Vet. Res., 26, 1303-1308.
8 Dale C.N. (1940), J. Bact., 40, 228-231.
9 Bohm K.H. (1971), Zbl. Bakt. I. Orig.,
218, 330-334.